<td id="wa4yw"><option id="wa4yw"></option></td>
  • <td id="wa4yw"><kbd id="wa4yw"></kbd></td><noscript id="wa4yw"><source id="wa4yw"></source></noscript>
    <bdo id="wa4yw"><kbd id="wa4yw"></kbd></bdo><input id="wa4yw"></input>
    <table id="wa4yw"><kbd id="wa4yw"></kbd></table>
  • <td id="wa4yw"><option id="wa4yw"></option></td>
    <option id="wa4yw"></option>
  • <table id="wa4yw"></table>
  • 發布時間:2020-08-11 09:21 原文鏈接: 基于PCR的DNA文庫篩選實驗方法

    試劑、試劑盒 PCR 混合物PCR 引物寡核苷酸 雜交寡核苷酸PCR 正對照PCR 主要混合物蒸餾水

    儀器、耗材 瓊脂糖凝膠電泳設備

    實驗步驟

    一、材料


    1. 緩沖液、溶液和試劑


    蒸餾水


    2. 酶和酶緩沖液


    PCR 混合物(可以放在一起冰凍),對于 lml 反應,包括:200nmol 的各種 dNTP;1XVent 溶液或等價物;2.5umol 的 MgCl2;2nmol 的各引物


    PCR 主要混合物(每個反應必須新鮮配置):lulVent DNA 聚合酶或等價物;99ul 上述 PCR 混合物


    3. 核酸和寡核苷酸


    2 個 PCR 引物寡核苷酸


    1 個雜交寡核苷酸


    PCR 正對照:10ng 全基因組 DNA 或能產生陽性 PCR 信號的起始文庫組分(見第 5 步)


    4. 培養基


    LB,1L 水中加入:10 g 蛋白胨、5 g 酵母抽提物、10 gNaCl, 用 NaOH 調節 pH 至 7.5SM,1L 水中加入:5.8 gNaCl、2 gMgS04、50 ml1mol/LTris-HCl(pH7.5)、5 ml2% 的明膠。


    含10mmol/LMgSO4 的 LB


    5. 特殊設備


    瓊脂糖凝膠電泳設備,包括溴化乙錠


    6. 其他


    96 孔板(CorningCostar)


    聚酯封口膜(NalgeNuncInternational)


    噬菌斑雜交所需材料


    7. 載體和細菌菌株


    用噬菌體載體構建的 DNA 庫


    用于擴增文庫的細菌菌株


    二、方法


    在篩選 DNA 文庫之前,需要測定幾個參數來建立有效的實驗條件。這些參數如下。


    1.PCR 條件。用篩庫的引物改變退火溫度和循環次數,以得到最大量的特異產物。模板的來源可以是將要篩選的文庫(106 個噬菌體顆粒)或者是 1ng 的全基因組 DNA。在PCR 過程中,噬菌體 DNA 釋放作為模板。因此,在反應之前不需要提純噬菌體 DNA。可以使用的典型引物應該產生 0.1~1.0kb 的產物(16~24 個核苷酸長度,50%G+C 含量)。如果需要(比如,當用與不同外顯子配對、橫跨一個大的內含子的引物時),目的序列可能比1kb 長,但產物的量可能會減少。


    2. 確定文庫中基因的豐度。用上面所建立的 PCR 條件,通過改變加入噬菌體的數目定量文庫。能產生 PCR 產物的噬菌體的最小數目就是實驗確定的該基因在文庫中的豐度。對于一個插入片段平均為 20kb 的基因組文庫來說,要有大于 105 的復雜度,以確保目的基因至少出現一次。對一個高復雜度的典型文庫來說,用 104~106 個噬菌體做模板,可以顯示基因在庫中的豐度。加入的含有一個或兩個目的基因拷貝的噬菌體的數目,應該用作文庫篩選。


    一旦確定了 PCR 條件和基因的豐度,就可以按照如下方法進行文庫篩選。


    1. 取 0.5 ml 新鮮的、在 LB 中過夜培養的細菌培養物,與 0.5 mlSM 混合,加入含有文庫的噬菌體,室溫溫育 20 min。


    2. 加入 20 ml 含 10 mmol/LMgSO4 的 LB,按 8X8 矩陣分裝到 96 孔板中,每孔 100ul。將板用聚酯封口膜密封,37°C 225r/min 振蕩培養 5~6 h, 對噬菌體進行擴增。擴增之后,噬菌體的濃度應該增加到大概 109 個/ml。大概有 1/3 的培養物能被均分進 96 孔板,在計算步驟 1 的加入噬菌體數時應當考慮到這一點。


    3. 將一排或一列 8 個孔中的噬菌體(每孔 25ul) 用多孔移液器混合(參看討論部分的可變樣式)。在這一步中,當取掉封口膜和移液時,一定要特別小心,以避免樣品交叉污染。如果想避免交叉污染,可以將板子短暫離心,以幫助清除封口膜上的液體。用聚酯封口膜將板子重新封閉,在 4°C 可以保存 1 個月。


    4. 用蒸餾水按 1:1 稀釋噬菌體,現在噬菌體就可以用作 PCR 模板了。


    5. 在 24.5ul PCR 主要混合物中加入 0.5ul 的模板(噬菌體),用上面建立的 PCR 條件進行 PCR。每個實驗需要有一個負對照(不加模板)和一個正對照(即能產生陽性信號的10ng 的總基因組 DNA 或一小份的起始文庫)。


    6. 通過瓊脂糖凝膠電泳分析 PCR 產物。用溴化乙錠染膠并拍照(Sambrook and Russell2001)。


    7.70°C 其空干燥凝膠,變性 DNA, 然后將寡核苷酸探針(末端用 32P 標記)用標準的DNA 雜交條件與干燥的凝膠直接進行雜交,洗滌,然后放射性自顯影 [這一步的技術細節可以參看 Israel(1993)]。用溴化乙錠染色很容易就能看到特異的 PCR 產物時,這一步是可以選做的,下面會有討論。也可以用標準技術將 DNA 轉移到硝酸纖維素膜或尼龍膜上后再進行雜交。


    笫 6 步和/或第 7 步東得的數據應該能鑒定出含有目的基因的亞庫(見討論部分笫一輪的篩選現在就完成了,與起始文庫相比陽性亞庫中的基因已經被富集了,后續的篩選循環是 1~7 步的重復,在擴增的亞庫噬菌體定量之后就可以進行。


    8. 通過噬菌斑法確定陽性孔中的噬菌體的量(Sambrook and Russell2001)。


    9. 用約為上一輪數量 1/30 的噬菌體侵染細菌,開始下一輪的篩選。


    10. 重復 2~9 步。


    <td id="wa4yw"><option id="wa4yw"></option></td>
  • <td id="wa4yw"><kbd id="wa4yw"></kbd></td><noscript id="wa4yw"><source id="wa4yw"></source></noscript>
    <bdo id="wa4yw"><kbd id="wa4yw"></kbd></bdo><input id="wa4yw"></input>
    <table id="wa4yw"><kbd id="wa4yw"></kbd></table>
  • <td id="wa4yw"><option id="wa4yw"></option></td>
    <option id="wa4yw"></option>
  • <table id="wa4yw"></table>
  • XVideos