預期應用
ELISA法定量測定大鼠血清、血漿或其它相關生物液體中INS含量。
實驗原理：
用純化的INS抗體包被微孔板，制成固相載體，往微孔中依次加入標本或標準品、生物素化的INS抗體、HRP標記的親和素，經過徹底洗滌后用底物（TMB）顯色。TMB在過氧化物酶的催化下轉化成藍色，并在酸的作用下轉化成zui終的黃色。顏色的深淺和樣品中的INS呈正相關。用酶標儀在450nm波長下測定吸光度（
值），計算樣品濃度。
試劑盒組成及試劑配制：
1、 酶標板：一塊（96孔）
2、 標準品（凍干品）： 2瓶，請臨用前15分鐘內配制。每瓶以樣品稀釋液稀釋至1ml，蓋好后室溫靜置大約10分鐘，同時反復顛倒/搓動以助溶解，其濃度為40 mIU/L，然后做系列倍比稀釋（注：不要直接在板中進行倍比稀釋），分別配制成40 mIU/L，20 mIU/L，10 mIU/L，5 mIU/L，2.5 mIU/L，1.25 mIU/L，0.625 mIU/L，樣品稀釋液直接作為空白孔 0 mIU/L。如配制20 mIU/L標準品：取0.5ml （不要少于0.5ml ）40 mIU/L的上述標準品加入含有0.5ml樣品稀釋液的Eppendorf管中，混勻即可，其余濃度以此類推。
3、 樣品稀釋液：1×20ml。
4、 檢測稀釋液A：1×10ml。
5、 檢測稀釋液B：1×10ml。
6、 檢測溶液A：1×120 /瓶（1:100）。臨用前以檢測稀釋液A 1:100稀釋（如：10 檢測溶液A / 990 檢測稀釋液A），充分混勻，稀釋前根據預先計算好的每次實驗所需的總量配制（100 /孔），實際配制時應多配制 0.1-0.2ml。
7、 檢測溶液B：1×120 /瓶（1:100）。臨用前以檢測稀釋液B 1:100稀釋。稀釋方法同檢測溶液A。
8、 底物溶液：1×10ml/瓶。
9、 濃洗滌液：1×30ml/瓶，使用時每瓶用蒸餾水稀釋25倍。
10、終止液：1×10ml/瓶（2 mol/L H2SO4）。
11、覆膜：5張
12、使用說明書：1份
自備物品
1、 酶標儀（建議儀器使用前提前預熱）
2、 微量加液器及吸頭，EP管
3、 蒸餾水或去離子水，濾紙
標本的采集及保存
1、 血清：全血標本請于室溫放置2小時或4 過夜后于1000 g離心20分鐘，取上清即可檢測，或將上清置于-20 或-80 保存，但應避免反復凍融。
2、 血漿：可用EDTA或肝素作為抗凝劑，標本采集后30分鐘內于 1000 g離心15分鐘，取上清即可檢測，或將上清置于-20 或-80 保存，但應避免反復凍融。
3、 其它生物標本：請1000 g離心20分鐘，取上清即可檢測，或將上清置于-20 或-80 保 存，但應避免反復凍融。
注：以上標本均應密封保存，4 保存應小于1周，-20 不應超過1個月，-80 不應超過2個月；標本溶血會影響zui后檢測結果，因此溶血標本不宜進行此項檢測。
操作步驟
實驗開始前，各試劑均應平衡至室溫，試劑不能直接在37 溶解；試劑或樣品配制時，均需充分混勻，混勻時盡量避免起泡。實驗前應預測樣品含量，如樣品濃度過高時，應對樣品進行稀釋，以使稀釋后的樣品符合試劑盒的檢測范圍，計算時再乘以相應的稀釋倍數。
1、 加樣：分別設空白孔、標準孔、待測樣品孔。空白孔加樣品稀釋液 100 ，余孔分別加標準品或待測樣品100 ，注意不要有氣泡，加樣 時將樣品加于酶標板底部，盡量不觸及孔壁，輕輕晃動混勻，酶標板加上蓋或覆膜，37 溫育2小時。為保證實驗結果有效性，每次實驗請使用新的標準品溶液。
2、 棄去液體，甩干，不用洗滌。每孔加檢測溶液A工作液 100 （臨用前配制），酶標板加上覆膜，37 溫育1小時。
3、 棄去孔內液體，甩干，洗板 3次，每次浸泡1-2分鐘，大約400 /每孔，甩干（也可輕拍將孔內液體拍干）。
4、 每孔加檢測溶液B工作液（臨用前配制）100 ，加上覆膜，37 溫育1小時。
5、 棄去孔內液體，甩干，洗板5次，方法同步驟3。
6、 每孔加底物溶液90 ，酶標板加上覆膜37 避光顯色（反應時間控制在15-30分鐘，當標準孔的前3-4孔有明顯的梯度藍色，后3-4孔梯度不明顯時，即可終止）。
7、 每孔加終止溶液50 ，終止反應，此時藍色立轉黃色。終止液的加入順序應盡量與底物液的加入順序相同。
8、 立即用酶標儀在450nm波長測量各孔的光密度（ 值）。