細胞骨架(cytoskeleton)是指真核細胞胞質中錯綜復雜的纖維狀網絡結構,主要包括微管(microtubule,MT,20~25
nm)和纖絲(filament)兩大類;另外,胞質中還散布著一些3~6
nm的細小纖維。按纖維的直徑、組成成分以及組裝結構的不同,纖絲又可分為微絲(microfilament,MF)、中間絲(intermediate
filament,IF)和粗絲(thick filament,TF)三類。微絲是肌動蛋白亞單位組成的螺旋狀纖維(F-actin),直徑為6~7
nm,又名肌動蛋白絲,其長度不定,多分布在近細胞膜的下方。微絲在不同種類的細胞中,它們又與某些結合蛋白一起形成不同的亞細胞結構,如張力纖維(stress
fiber)、肌肉細絲、腸上皮絨毛軸心等。現在觀察微絲可以用電鏡、組織化學、免疫細胞化學等手段。本實驗用普通光鏡觀察到細胞骨架,是因為骨架纖維成束分布、結構經染色后,有夸大作用。由于細胞經TritonX-100抽提后剩下的主要是細胞骨架成分,使得顯現更清晰。
細胞骨架在通常情況下不穩定:如低溫、高壓、餓酸處理等。當用適當濃度的TritonX-100處理細胞時,能溶解質膜結構中及細胞內許多蛋白質,而細胞骨架系統的蛋白質卻不被破壞顯得更清晰,M-緩沖液洗滌細胞,可以提高細胞骨架的穩定性,戊二醛固定能較好地保存細胞骨架成分,經考馬斯亮藍R250染色后,可使細胞骨架蛋白著色,而胞質背景著色弱,有利細胞骨架纖維顯示。
1.實 驗 目 的
1.1. 掌握考馬斯亮藍R250(coomassie brilliant blue R250)染細胞胞質微絲的方法。
1.2. 對細胞內微絲的分布有一個整體上的認識。
2.實 驗 原 理
考馬斯亮藍R250是一種普通的蛋白質染料,它可以使各種細胞骨架蛋白質著色,并非特異地顯示微絲,但是由于有些細胞骨架纖維在該實驗條件下不夠穩定,例如微管;還有些類型的纖維太細,在光學顯微鏡下無法分辨,因此我們看到的主要是微絲組成的張力纖維,直徑約
40nm左右。張力纖維形態長而直,常常與細胞的長軸平行并貫穿細胞全長。觀察微絲可以用電鏡、組織化學、免疫細胞化學等手段,本實驗主要介紹用考馬斯亮藍R250顯示由微絲組成的張力纖維的實驗方法。
染色時用的M-緩沖液,其中咪唑是緩沖劑,EGTA和EDTA螯合Ca2+離子,溶液中并提供 Mg2+離子,在此低鈣條件下,骨架纖維保持聚合狀態并且較為舒張。
3.實 驗 用 品
3.1 材料 洋蔥鱗莖內表皮細胞或培養的成纖維細胞。
3.2 試劑
3.2.1. 0.01 mol/L 磷酸鹽緩沖生物鹽水(PBS)配法
0.2mol/L Na2HPO4/KH2PO4緩沖液(pH7.3) 50 ml
NaCl 0.15 mol/L
重蒸餾水 至1000 ml
其中PB的配法: 0.2mo1/L Na2HPO4 77 ml
0.2mo1/L NaH2PO4 23 ml
3.2.2. M-緩沖液
咪唑(imidazole, pH6.7) 50 mmol/L
KC1 50 mmol/L
MgCl2 0.5 mmol/L
EGTA l mmol/L
EDTA 0.l mmol/L
巰基乙醇(mercaptoethanol) l mmol/L
甘油 4 mmol/L
用1 mol/L HCl調pH至7.2。
3.2.3. 1%的Triton X-l00/M-緩沖液
3.2.4. 0.2%考馬斯亮藍R250染液,溶劑是:
甲醇 46.5 ml
冰醋酸 7 ml
蒸餾水 46.5 ml
3.2.5. 30%戊二醛-PB溶液,pH7.2
3.3 器材 普通光學顯微鏡、恒溫箱、培養皿、燒杯、吸管、載玻片及蓋玻片、鑷子。
4.實 驗 方 法
撕取一薄片洋蔥鱗莖內表皮細胞(約1cm3)于載玻片上或取長有成纖維細胞的蓋片條
↓
PBS液輕輕涮洗
↓
l% TritonX-l00/M-緩沖液處理l5min(室溫或37℃)
(Triton X-l00是非離子型表面活性劑(去污劑),能增加細胞膜通透性并抽提部分雜蛋白質,使骨架圖像更清晰)
↓
M-緩沖液輕輕洗細胞3次(穩定細胞骨架)
↓
3%戊二醛-PB液固定細胞5~l5min
↓
PBS液洗細胞若干次
↓濾紙吸干
0.2% 考馬斯亮藍R250染片30min
↓
小心地用水漂洗
↓
空氣干燥
↓
直接觀察或用樹脂封片
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