1. 動物分組及用藥
(1)將40只小鼠隨機分為正常對照組10只和荷瘤組30只。
(2)正常組于右腋下皮下注射生理鹽水0.2 ml/只,荷瘤組右腋下皮下注射瘤細胞懸液0.2 ml/只。
(3)荷瘤組隨機分為3組,并于肺俞及接種局部脫毛(腧穴定位參考林文編5實驗針灸學6),于次日開始治療。
(4)模型對照組貼敷無藥硬膏。
(5)局部貼敷組用抗癌膏貼敷接種局部。
(6)穴位貼敷組用抗癌膏貼敷肺俞穴及接種局部,各組均隔日更換膏藥,共治療14天。
(7)正常對照組不做藥物處理。于第15日處死小鼠,摘眼球取血,取脾臟。 2. 檢測方法:脾NK細胞活性檢測。
(1)脾NK細胞的制備
①無菌取小鼠脾臟,制成脾細胞懸液,離心后取沉底脾淋巴細胞
②用含10%FCS的1640完全培養液移入100 ml 細胞培養瓶中
③37℃、5%CO2下培養4 h,調整細胞濃度為6×106/ml,備用。
(2)靶細胞:傳代培養的YAC-1細胞在實驗前一天換液,調整濃度為3×105/ml。
(3)NK細胞殺傷活性的測定
①用96孔細胞培養板。
②每份樣品設
a:效應細胞自發釋放孔(效應脾細胞0.1 ml,完全培養液0.1 ml)
b:靶細胞自發釋放孔(靶細胞0.1 ml,培養液0.1 ml)
c:殺傷實驗孔(靶細胞0.1 ml,效應脾細胞0.1 ml)
d:最大殺傷實驗孔同c,每孔設3個重復孔,離心,棄上清液0.1 ml,加入0.1 ml 2%X-100。
③于37℃、5%CO2下培養24 h,離心(1000 rpm,5 min)。
④棄上清液,每孔加NAG酶反應物液100 ul,置濕盒37℃溫育40 min。
⑤每孔加中止液100ul,在酶聯檢測儀410 nm處測A值,分別以a、b、c、d表示。
⑥按下公式計算NK細胞殺傷活性:細胞毒指數(CI)=(a+b)-c(a+b)-d×100%。
3. IL-活性測定:
(1)脾細胞制備同上。
(2)IL-2的誘生
①將6×106/ml脾細胞懸液加入24孔培養板中,調整細胞濃度為10 ug/ml。
②37℃、5%CO2下培養48 h(1000 rpm,10 min)收集上清液。
③無菌塑尖管為待測樣品,-20℃保存檢測活性。
(3)活性測定
①以IL-2依賴細胞株CTLL-2為靶細胞,用20%FCS的1640培養液調整濃度為2.5×105/ml,加入96孔培養板,每孔100 ul。
②再加入100 ul待測樣品,每份樣品設三個重復孔,并設陰性對照孔。
③培養48 h后離心(2000 rpm,10 min),棄上清液。
④加NAG酶反應底物100 ul,置濕盒37℃溫育40 min后,每孔加中止液100 ul,在酶聯檢測儀410 nm處測A值。
⑤按下列公式計算CTLL-2增殖率,表示IL-2活性。增殖率(%)=樣品A值-陰性對照孔A值陰性對照孔A值×100%。
4. 統計方法采用 t 檢驗。 展開 |