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  • 發布時間:2019-04-21 15:26 原文鏈接: 質粒DNA的小量制備

    實驗概要

    本方法用于從細菌中制備提純少量質粒DNA。

    主要試劑

    1. 溶液I
    50mmol/L葡萄糖
    25mmol/L Tris.Cl(pH8.0)
    10mmol/LEDTA(pH8.0)
    溶液I可成批配制,每瓶約100ml,在6.895×104Pa高壓下蒸氣滅菌15分鐘,貯存于4℃。

    2. 溶液Ⅱ
    0.2mol/L NaOH(臨用前用10mol/L貯存液現用現稀釋)
    1%SDS

    3. 溶液Ⅲ
    5mol/L乙酸鉀 60ml
    冰乙酸 11.5ml
    水 28.5ml
    所配成的溶液對鉀是3mol/L,對乙酸根是5mol/L。

    4. STET
    0.1mol/L NaCL
    10mmol/L Tris.Cl(pH8.0)
    1mmol/L EDTA(pH8.0)
    5% Triton X-100

    5. 溶菌酶溶液
     10mg/ml,用10mmol/L Tris.Cl(pH8.0)配制。

    實驗步驟

    1. 細菌的收獲
      1) 將2ml含相應抗生素的LB加入到容量為15ml 并通氣良好(不蓋緊)的試管中,然后接入一單菌落,于30℃劇烈振搖下培養過夜。
        2) 將1.5ml培養物倒入微量離心管中,用微量離心機于4℃以12000g離心30秒,將剩余的培養物貯存于4℃。
        3) 吸去培養液,使細菌沉淀盡可能干燥。除去上清的簡便方法是用一次性使用的吸頭與真空管道相連,輕緩抽吸,并用吸頭接觸液面。當液體從管中吸出時,盡可能使吸頭遠離細菌沉淀,然后繼續用吸頭通過抽真空除去附于管壁的液滴。
    2. 堿裂解法
        1) 將細菌沉淀,所得重懸于100μl用冰預冷的溶液I中,劇烈振蕩。須確使細菌沉淀在溶液I中完全分散,將兩個微量離心管的管底部互相接觸震蕩,可使沉淀迅速分散。
        2) 加200μl新配制的溶液Ⅱ。蓋緊管口,快速顛倒離心管5次,以混合內容物。應確保離心管的整個內表面均與溶液Ⅱ接觸。不要振蕩,將離心管放置于冰上。
        3) 加150μl用冰預冷的溶液Ⅲ,蓋緊管口,將管倒置后和地振蕩10秒鐘溶液Ⅲ在粘稠的細菌裂解物中分散均勻,之后將管置于冰上3-5分鐘。
        4) 用微量離心機于4℃12 000g離心5分種,將上清轉移到另一離心管中。
        5) 可做可不做:加等量酚:氯仿,振蕩混勻,用微量離心機于4 ℃以12000g離心2分鐘,將上清轉移到另一良心管中。有些工作者認為不必用酚:氯仿進行抽提,然而由于一些未知的原因,省略這一步,往往會得到可耐受限制酶切反應的DNA。
       6) 用2倍休積的乙醇于室溫沉淀雙鏈DNA。振蕩混合,于室溫放置2分鐘。
       7) 用微量離心機于4℃以12 000g離心5分鐘。
       8) 小心吸去上清液,將離心管倒置于一張紙巾上,以使所有液體流出。再將附于管壁的液滴除盡。除去上清的簡便方法是用一次性使用的吸頭與真空管道相連,并用吸頭接觸液面。當液體從管中吸出時,盡量使吸頭遠離核酸沉淀,然后繼續用吸頭通過抽真空除去附于管壁的液滴。
       9) 用1ml70%乙醇于4℃洗滌雙鏈DNA沉淀,按步驟H所術方法去掉上清,在空氣中使核酸沉淀干燥10分鐘。

    注:
    1. 此法制備的高拷貝數質粒(如Xf3或pUC),其產量一般約為:每毫升原細菌培養物3-5μg。
    2.如果要通過限制酶切割反應來分析DNA,可取1μl DNA溶液加到另一含8μl水的微量離心管內,加1μl 10×限制酶緩沖液和1單位所需限制酶,在適宜溫育1-2小時。將剩余的DNA貯存于-20℃。
    3. 此方法按適當比例放大可適用于100ml細菌培養物:

    3. 煮沸裂解

       1) 將細菌沉淀,所得重懸于350μlSTET中。

       2) 加25μl新配制的溶菌酶溶液,振蕩3秒鐘以混勻之。如果溶淮中pH低于8.0,溶菌酶就不能有效發揮作用。
       3) 將離心管放入煮沸的水浴中,時間恰為40秒。
       4) 用微量離心機于室溫以12 000g離心10分種。
       5) 用無菌牙簽從微量離心管中去除細菌碎片。
       6) 在上清中加入40μl 5mol/L乙酸鈉(pH5.2)和420μl異丙醇,振蕩混勻,于室溫放置5分鐘。
       7) 用微量離心機于4℃以12 000g離心5分種,回收核酸沉淀。
       8) 小心吸去上清液,將離心管倒置于一張紙巾上,以使所有液體流出。再將附于管壁的液滴除盡。除去上清的簡便方法是用一次性使用的吸頭與真空管道相連,輕緩抽吸,并用吸頭接觸液面。當液體從管中吸出時,盡可能使吸頭遠離核酸沉淀,然后繼續用吸頭通過抽真空除去附于管的液滴。
       9) 加1ml 70%乙醇,于4℃以12 000g離心2分鐘。
      10) 按步驟H所述再次輕輕地吸去上清,這一步操作要格外小心,因為有時沉淀塊貼壁不緊,去除管壁上形成的所有乙醇液滴,打開管口,放于室溫直至乙醇揮發殆盡,管內無可見的液體(2-5)分鐘。
      11) 用50μl含無DNA酶的胰RNA酶(20μg/ml)的TE(pH8.0)溶解核酸稍加振蕩,貯存于-20℃。
    注:當從表達內切核酸酶A的大腸桿菌株(endA 株,如HB101 )中小量制粒尤其DNA時,建議舍棄煮沸法。因為煮沸步驟不能完全滅活內切核酸酶A,以后在Mg2 存在下溫育(V中用限制酶時)質粒DNA可被降解。在上述方案的步驟I之間增加一步,即用酚:氯仿進行抽提,可以避免這一問題。


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