CHO細胞的穩定轉染與基因表達
1、pcDNA3.1＋-gD的線性化: pcDNA3.1＋使用說明書推薦了以下幾個酶作為線性化酶(BglⅡ MfeⅡ Bst1107Ⅰ Eam1105Ⅰ PvuⅠ ScaⅠ SspⅠ),通過DNAMAN分析gD序列發現其帶有MfeⅡ酶切位點。2、轉染前一天,在60mm的dish中接種8×105個細胞,加入5ml培養基(含血清,不含抗生素),37℃,5%CO2培養,至轉染時要求細胞40%-80%匯合。3、通過分光光度計測定pcDNA3.1＋-gD的濃度,用不含血清、抗生素、蛋白質的培養基稀釋2.5ug的pcDNA3.1＋-gD至總體積150ul，其最小濃度不低于0.1ug/ul,稀釋后應顛倒幾次EP管以混勻混合物。4、向混勻的混合物中加入15ul轉染試劑(PolyFect Transfection Reagent QIAGEN),用加樣器吹打5次。6、在室溫下(20-25℃)孵育混合物5-10分鐘。7、在孵育的同時，吸......閱讀全文
CHO細胞的穩定轉染與基因表達
1、pcDNA3.1＋-gD的線性化: pcDNA3.1＋使用說明書推薦了以下幾個酶作為線性化酶(BglⅡ MfeⅡ Bst1107Ⅰ Eam1105Ⅰ PvuⅠ ScaⅠ SspⅠ),通過DNAMAN分析gD序列發現其帶有MfeⅡ酶切位點。2、轉染前一天,在60mm的dish中接種8×105個細胞
CHO細胞表達系統與酵母細胞表達系統比較
?CHO細胞表達系統與畢赤酵母表達系統是當前發展前景看好的兩個表達系統，為了能夠更加直觀地對兩個表達系統有一定的認識，特意在此篇中對兩個表達系統作一定的比較，從而能夠更進一步的對兩個表達系統有更深的了解1．CHO細胞表達系統? ?? ??（1）優點? ?? ? CHO細胞屬于成纖維細胞，既可以貼壁生
CHO細胞表達體系及其特點
子生物學、分子免疫學等學科的發展使基因工程疫苗具有越來越重要的地位。在基因工程疫苗研究的動物細胞表達系統中，最具代表性的就是中國倉鼠卵巢細胞(Chinese Hamster Ovary，CHO)。它是用來表達外源蛋白最多也最成功的一類細胞。本文就 CHO細胞表達系統在疫苗研制中的應用做一綜述。C
篩選穩定表達細胞株轉染后多久藥物篩選
穩定細胞株篩選是一個長期的過程，穩定細胞株篩選優化，有許多條件需要摸索，而且是從源頭開始①在構建載體時，目的基因直接整合到細胞染色體組上，最好不要通過先瞬轉在篩選穩定細胞株的這種方法，因為轉染效率沒有保證②高表達載體的構建，哺乳動物表達量一直是它自身的缺點，最好根據高表達載體定向的馴化細胞，提高蛋白
哺乳動物細胞基因穩定轉染的實驗
基本方案 ? ? ? ? ? ? 實驗材料 哺乳動物細胞 試劑、試劑盒
哺乳動物細胞基因穩定轉染的實驗
分析基因的功能常需要形成含有穩定整合了該基因的哺乳動物細胞系。在轉染中大約有1/104細胞將穩定整合外源因而可用一顯性（正向）選擇標記來分離穩定的轉化細胞。用可高效轉染的細胞系來確保轉染成功。另外，應包括合適的對照以確定目的基因無細胞毒性。實驗材料哺乳動物細胞試劑、試劑盒完全培養液儀器、耗材培養箱離
哺乳動物細胞基因穩定轉染的實驗
實驗材料 哺乳動物細胞試劑、試劑盒 完全培養液儀器、耗材 培養箱離心管實驗步驟 1. ?確定所要轉染的細抱系能呈獨立集落生長。對于貼壁細胞，在10 cm 組織培養培養皿中接種約100個細胞，培養10~12天，毎4天換液1次。亞甲藍染色后對成活的細胞集落進行計數。?2. ?確定母代細胞的選擇條件：將一
轉染細胞的穩定篩選實驗
本實驗主要用于獲得含目的外源基因的真核細胞。實驗方法原理外源基因轉染真核細胞后整合入基因組DNA，能夠長期存在于細胞中，隨染色體復制而傳給子代。外源基因進入培養細胞一般要經過幾天才能夠整合入基因組DNA。實驗材料轉染細胞試劑、試劑盒抗生素培養基胰酶儀器、耗材6孔板24孔板96孔板CO2培養箱濾紙片培
轉染細胞的穩定篩選實驗
? ? ? ? ? ? 實驗方法原理 外源基因轉染真核細胞后整合入基因組DNA，能夠長期存在于細胞中，隨染色體復制而傳給子代。外源基因進入培養細胞一般要經過幾天才能夠整合入基因組DNA。 實驗材料
轉染細胞的穩定篩選實驗
實驗材料?轉染細胞試劑、試劑盒?抗生素培養基胰酶儀器、耗材?6孔板24孔板96孔板CO2培養箱濾紙片培養瓶實驗步驟?1．確定抗生素作用的最佳濃度：不同的細胞株對各種抗生素有不同的敏感性，因此在篩選前要做預試驗，確定抗生素對所選擇細胞的最低作用濃度。1) 提前24 小時在96 孔板或24 孔板中接種細
細胞的分化與基因表達
細胞分化是個體發育過程中細胞之間產生穩定差異的過程。所以，細胞分化是指同源細胞通過分裂，發生形態、結構與功能特征穩定差異的過程。細胞分化的實質是基因選擇性表達的結果，在個體發育過程中基因按照一定程序相繼激活的現象，稱為基因的差次表達（differential expression）或順序表達（Seq
簡述基因轉染技術的表達和檢測
在篩選出轉化子后還需要鑒定轉導細胞中外源基因的表達狀況。其中包括對目的基因和標記基因的鑒定。常用方法有原位雜交、Northern雜交、免疫組織化學染色等，原位及Northern雜交是檢測外源基因轉錄出的mRNA,后者則是檢測外源基因翻譯出的蛋白質。
干細胞穩定轉染操作步驟
外源基因進入細胞主要有三種方法：電擊法、磷酸鈣法和脂質體介導法，實際上其基本原理都是利用不同的方法在細胞上短時間暫時性的穿孔讓外源質粒進入，但是由于前兩者的效率低且傷害較大，所以現在除了對于一些特殊細胞系，一般的轉染方法都利用脂質體。利用脂質體轉染和其他方法一樣，最重要的就是防治其毒性，因此脂質體與
穩定轉染細胞株的構建
1. 2?穩定轉染細胞株的構建原理：穩定轉染，就是轉染的質粒DNA整合到宿主細胞染色體上，使宿主細胞可長期表達目的基因及蛋白。需要在瞬時轉染基礎上對靶細胞進行篩選或者應用高轉染效率的病毒，根據不同基因載體中所含有的抗性標志選用相應的藥物進行細胞傳代，從而得到可穩定表達目的基因的細胞系。應用：????
基因轉染技術的轉染與分析介紹
具體的基因轉染條件應參考所使用的試劑和方法進行優化。靶基因被導入細胞后，一般在轉染后48小時，靶基因即在細胞內表達。根據不同的實驗目的，48小時后即可進行靶基因表達的檢測等實驗。如若建立穩定的細胞系，則可對靶細胞進行篩選，根據不同基因載體中所含有的抗性標志選用相應的藥物，最常用的真核表達基因載體
瞬時轉染真核基因表達調控技術
調節瞬時轉染基因的表達l??????四環素作為哺乳動物細胞中可誘導基因表達的調控物階段一：pTet-tTAk穩定轉染成纖維細胞培養和轉染細胞1.??????在DMEM完全培養液中培養貼壁細胞。轉染前一天，把細胞換到含有0.5μg/ml四環素-HCl（四環素）的DMEM完全培養液中。每個10 cm培養
瞬時轉染真核基因表達調控技術
調節瞬時轉染基因的表達*四環素作為哺乳動物細胞中可誘導基因表達的調控物階段一：pTet-tTAk穩定轉染成纖維細胞培養和轉染細胞1.?在DMEM完全培養液中培養貼壁細胞。轉染前一天，把細胞換到含有0.5μg/ml四環素-HCl（四環素）的DMEM完全培養液中。每個10 cm培養皿中加入足量細胞，使轉
穩定轉染細胞時，質粒總是丟失
穩定轉染的細胞株，就是轉染后質粒可以穩定整合到基因組上不會因細胞分裂而丟失。區別于質粒瞬時轉染不能長時間保留質粒在細胞里。
藥物研發的好幫手蛋白質表達系統
近年來，隨著生物藥市場和基因工程技術的發展，重組治療性抗體或者單抗的需求在生物藥中的比例也逐年上升。重組mAbs被應用于包括癌癥及免疫系統缺陷在內的許多疾病的治療當中。 重組mAbs通過基因工程技術改造后可以在多種宿主細胞表達。重組mAbs在表達后進行翻譯后修飾、蛋白質折疊、組裝及適當的糖
脂質體介導的真核細胞轉染實驗——脂質體進行穩定轉染
實驗材料哺乳動物細胞試劑、試劑盒DMEM儀器、耗材培養箱離心管實驗步驟1. ?接種細胞（見“脂質體介導短暫表達”步驟1）長至50%匯片。?2. ?制備DNA/脂質體混合物，轉染細胞（見“脂質體介導短暫表達”步驟2和3）。3. ?每孔細胞加入1 ml DMEM-20完全培養液，37℃ 培養箱培養48
穩定表達細胞株的建立
1、將轉染后的細胞按照一定的比例接種到6孔板中（一般選用1：10和1：100兩個梯度），分別采用1200mg/ml，1000mg/ml和800mg/ml的G418進行篩選；以轉染攜帶EGFP質粒載體的細胞作為陽性對照，以未轉染質粒載體的細胞作為陰性對照；2、每3～4天換液一次；3、篩選20～30天，
藥物研發的好幫手—蛋白質表達系統
近年來，隨著生物藥市場和基因工程技術的發展，重組治療性抗體或者單抗的需求在生物藥中的比例也逐年上升。重組mAbs被應用于包括癌癥及免疫系統缺陷在內的許多疾病的治療當中。重組mAbs通過基因工程技術改造后可以在多種宿主細胞表達。重組mAbs在表達后進行翻譯后修飾、蛋白質折疊、組裝及適當的糖基化才能具有
CHO工程細胞Horizon－HDBioP3的測試與應用
CHO工程細胞革命Horizon Discovery CHO工程細胞系來源于ECACC（歐洲細胞庫） CHO-K1 細胞，應用Horizon Discovery的重組腺病毒（rAAV）技術，通過同源重組的方式將GS基因（谷氨酰胺合成酶）第六外顯子（酶催化活力必須元件）敲除，得到無谷氨酰胺合成
四環素控制系統誘導基因表達實驗——pTettTAK－穩定轉染1
為了克服用別的方法在哺乳動物細胞中誘導基因表達所遇到的困難，四環素調控的基因表達系統被發展出來。這些困難包括多向性的、非特異的作用；或誘導試劑、處理方法對細胞的毒性；高的非誘導表達背景等。本實驗所描述的方法是用改造的含有轉錄激活因子的四環素調控系統，它能在培養的細胞和轉基因小鼠（在某種程度上）中表達
四環素控制系統誘導基因表達實驗——pTettTAK－穩定轉染2
實驗方法原理tTA 是一種融合蛋白，它是由來自于大腸桿菌的四環素抑制蛋白和皰疹病毒的 VP16 蛋白的轉錄激活區域組成的。在缺乏四環素時，tTA 就結合到并激活位于基因前端的由 Tn10 和一個小的 CMV 啟動子組成的七聚體結構的四環素抗性控制子（簡稱 Tet P）。當 tTA 結合到 Tet P
質粒轉染細胞之后多久測外源性mrna表達
不整合入基因組中，可以整合到細胞基因組上進行表達，比如腺病毒類的表達載體；有些質粒上有整合的序列。一般的表達質粒上后面有自帶的polyA序列，所以產生的mRNA是帶polyA尾巴的質粒轉染細胞后是整合到基因組中還是游離存在這要看你用的是哪一種質粒載體，有些質粒就在細胞中進行表達
細胞轉染的途徑與方法
細胞轉染是指將外源分子如DNA，RNA等導入真核細胞的技術,它是研究基因表達調控，突變分析等的常規工具。細胞轉染分為瞬時轉染和穩定轉染。瞬時轉染是指外源基因進入受體細胞后，存在于游離的載體上，不整合到細胞的染色體上。穩定轉染是指DNA整合到宿主細胞的染色體中。細胞轉染途徑（一）?物理介導：電穿孔法、
基因的復制與表達
? 生物的遺傳物質基礎是核酸（nucleic acid),它也是基因的基本結構，它們的化學組成分子結構符合遺傳物質的穩定性、連續性及多樣性的要求。 （一)核酸的化學組成 核酸結構的基本單位是核苷酸（nucleic acid)，每個核苷酸由1個磷酸、1個五碳糖和1個堿基3部分組成。核酸有兩類：
DNA重組（DNA－recombination）技術：外源基因的蛋白表達3
（6）遺傳標記： 從成千上萬個哺乳細胞中，檢測出極少數的含DNA重組體的轉染細胞，并鑒定已導入外源DNA是哺乳動物細胞基因表達系統的一個關鍵內容。因此，在真核生物表達載體上必須附有標記基因，才能進行篩選。常用的標記基因有：胸苷激酶基因（thymidine kinase，TK）、二氫葉酸還原酶
穩定表達的概念
中文名稱穩定表達英文名稱stable expression定 義(1)外源基因轉染真核細胞并整合入基因組后的表達。重組基因的穩定表達水平一般要比短暫表達低1～2個數量級。(2)基因工程表達系統中工程菌株或細胞雖經過多次傳代或條件變化，但表達水平仍然保持穩定的現象。應用學科生物化學與分子生物學（一級