逆轉錄RTPCR實驗操作程序及注意事項
實驗操作過程中必須帶口罩、手套，實驗室盡量避免人員干擾。RT-PCR的試劑都應在冰上融化，等完全融化后再取；用過的試劑應瞬間離心后放回-20℃保存；試劑應按順序加，加完后再混勻離心。加入試劑前在管壁上做好標記，避免加錯試劑；加過一種試劑后將EP管蓋子的方向改變，避免重復和漏加；不同試劑和樣品要更換吸嘴，避免污染；吸取試劑和樣品前檢查移液器的標數是否正確，核對正確后再取，避免浪費試劑。 反應體系放入PCR儀前應檢查熒光定量PCR儀的反應程序或設計新的反應程序，做PCR時循環參數應根據反應體系來定。 逆轉錄完成后，產物要加滅菌去了離子水稀釋后再做PCR。這一步容易遺忘，不但導致結果異常，還浪費RT產物及其他試劑。瓊脂糖凝膠電泳檢測PCR產物是非常重要的，內參的上樣量應減半。制膠時要保證上樣孔完整，上樣時樣品孔中不能有氣泡，如果有氣泡應用移液器反復吹打將氣泡趕走；上樣時樣品不能漏也不能溢，如果上樣時槍頭插得太深刺破......閱讀全文
逆轉錄RTPCR實驗操作程序及注意事項
實驗操作過程中必須帶口罩、手套，實驗室盡量避免人員干擾。RT-PCR的試劑都應在冰上融化，等完全融化后再取；用過的試劑應瞬間離心后放回-20℃保存；試劑應按順序加，加完后再混勻離心。加入試劑前在管壁上做好標記，避免加錯試劑；加過一種試劑后將EP管蓋子的方向改變，避免重復和漏加；不同試劑和樣品要更換吸
逆轉錄RTPCR實驗儀器及條件
實驗器具的準備：RT-PCR所用的500μl和200μl薄壁EP管、移液器吸嘴最好用進口的，因為進口EP管、移液器吸嘴已經去除了RNasin，也已經滅菌處理過，可以直接用。實驗前用干凈的鑷子夾取出EP管、移液器吸嘴插好備用，注意鑷子不要碰到EP管內壁和吸嘴的尖部。如果用國產500μl和200μlEP
逆轉錄PCR(RTPCR)
實驗四 逆轉錄PCR?(RT-PCR?)【實驗目的】1．了解用逆轉錄PCR?法獲取目的基因的原理。2．學習和掌握逆轉錄PCR?的技術和方法。【實驗原理】聚合酶鏈式反應（PCR）過程利用模板變性，引物退火和引物延伸的多個循環來擴增DNA序列。因為上一輪的擴增產物又作為下一輪擴增的模板，是一個指數增長的
RTPCR－實驗原理及注意事項
一、實驗方法原理逆轉錄-聚合酶鏈反應 （Reverse Transcription-Polymerase Chain Reaction,RT-PCR） 的原理是：提取組織或細胞中的總 RNA，以其中的 mRNA 作為模板，采用 Oligo（dT）或隨機引物利用逆轉錄酶反轉錄成 cDNA。再以 cDN
逆轉錄聚合酶鏈反應（RTPCR，rtpcr）注意事項
注意事項1．在實驗過程中要防止RNA的降解，保持RNA的完整性。在總RNA的提取過程中，注意避免mRNA的斷裂；?2． 為了防止非特異性擴增，必須設陰性對照；?3．內參的設定：主要為了用于靶RNA的定量。常用的內參有G3PD（甘油醛-3-磷酸脫氫酶）、β-Actin（β-肌動蛋白）等。其目的在于避免
逆轉錄RTPCR常見問題分析
RT-PCR常見問題（一）RT-PCR靈敏度：在瓊脂糖凝膠分析中看到少量或沒有RT-PCR產物。可能原因解決方案RNA被降解在用來驗證完整性之前先在變性膠上分析RNA。使用良好的無污染技術分離RNA。在將組織從動物體取出后立刻處理。RNA中包含逆轉錄抑制劑通過乙醇沉淀RNA除去抑制劑。用70%（體積
逆轉錄PCR(RTPCR)擴增基因特異片段
逆轉錄PCR(RT-PCR)擴增基因特異片段 一、實驗原理RT-PCR是將RNA的反轉錄（RT）和cDNA的聚合酶鏈式擴增（PCR）相結合的技術。首先經反轉錄酶的作用從RNA合成?cDNA，再以cDNA為模板，擴增合成目的片段。RT-PCR技術靈敏而且用途廣泛，可用于檢測細胞中基因表達水平，細胞中R
RTPCR實驗操作的注意事項
在做Northern等雜交實驗、構建cDNA文庫、獲取能夠編碼真核生物蛋白的基因、獲得RNA病毒基因時，會用到RNA提取和RT-PCR技術。真核生物的基因組是DNA，為什么不直接從DNA PCR得到我們需要的基因呢？因為真核生物的基因含有大量的非編碼區，稱為內元（intron），真正編碼蛋白的區段是
逆轉錄聚合酶鏈反應（RTPCR，rtpcr）
逆轉錄-聚合酶鏈反應?（Reverse Transcription-Polymerase Chain Reaction，RT-PCR）可以：(1）分析基因的轉錄產物；（2）獲取目的基因；（3）合成cDNA探針；（4）構建RNA高效轉錄系統。實驗方法原理逆轉錄-聚合酶鏈反應 (Reverse Tran
逆轉錄聚合酶鏈反應（RTPCR，rtpcr）
? ? ? ? ? ? 實驗方法原理 提取組織或細胞中的總RNA，以其中的mRNA作為模板，采用Oligo（dT）或隨機引物利用逆轉錄酶反轉錄成cDNA，再以cDNA為模板進行PCR擴增，從而獲得目的基因或檢測基因表達。
逆轉錄聚合酶鏈反應（RTPCR，rtpcr）
實驗方法原理逆轉錄-聚合酶鏈反應 (Reverse Transcription-Polymerase Chain Reaction，RT-PCR)的原理是：提取組織或細胞中的總RNA，以其中的mRNA作為模板，采用Oligo（dT）或隨機引物利用逆轉錄酶反轉錄成cDNA。再以cDNA為模板進行PCR
逆轉錄聚合酶鏈反應（RTPCR，rtpcr）
實驗方法原理 逆轉錄-聚合酶鏈反應 (Reverse Transcription-Polymerase Chain Reaction，RT-PCR)的原理是：提取組織或細胞中的總RNA，以其中的mRNA作為模板，采用Oligo（dT）或隨機引物利用逆轉錄酶反轉錄成cDNA。再以cDNA為模板
逆轉錄聚合酶鏈式反應（RTPCR）
實驗概要提取組織或細胞中的總RNA，以其中的mRNA作為模板，采用Oligo（dT）或隨機引物利用逆轉錄酶反轉錄成cDNA。再以cDNA為模板進行PCR擴增，而獲得目的基因或檢測基因表達。RT-PCR使RNA檢測的靈敏性提高了幾個數量級，使一些極為微量RNA樣品分析成為可能。該技術主要用于：分析基因
PCR實驗操作程序
1. 在無菌的0.5ml或0.2ml離心管中按下列操作程序加樣：反應物 加樣順序 體積(μl) 終濃度去離子水 1 29.410×Buffer B 2 5 1×4×dNTP混合物 3 5 各200μmol/L?MgCl2 4 3 1.5mmol/L有義引物 5 2.6 0.25μmol/L反義引物
PCR實驗操作程序
1. 在無菌的0.5ml或0.2ml離心管中按下列操作程序加樣：反應物 加樣順序 體積(μl) 終濃度去離子水 1 29.410×Buffer B 2 5 1×4×dNTP混合物 3 5 各200μmol/L MgCl2 4 3 1.5mmol/L有義引物 5 2.6 0.25μmol/L反義引物
PCR實驗操作程序
1. 在無菌的0.5ml或0.2ml離心管中按下列操作程序加樣： 反應物 加樣順序 體積(μl) 終濃度 去離子水 1 29.4 10×Buffer B 2 5 1× 4×dNTP混合物 3 5 各200μmol/L MgCl2 4 3 1.5mmol/L 有義引物 5 2.6 0.
實時－RTPCR－實驗
試劑、試劑盒 RNA 模板DNA 酶緩沖液 DNA 酶 IDEPC 處理的水oligo(dT)MgCl2 dNTPEDTA實驗步驟 —、材料1. 緩沖液、溶液和試劑①10ul 消化體系的組分。RNA 模板（最多 1ug/10ul) ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? xul10X
RTPCR實驗流程
1、技術原理實時熒光定量PCR是在PCR反應體系中加入熒光基團，利用熒光信號累積實時檢測整個PCR進程，zui后通過Ct值與標準曲線的處理對未知樣本進行定量分析，是zui常用的基因表達分析技術。有絕對定量與相對定量兩種定量分析方法。??圖 各種熒光定量曲線示意圖2、服務流程及質控2.1?實驗流程樣本
實時－RTPCR－實驗
? ? ? ? ? ? 試劑、試劑盒 RNA 模板 DNA 酶緩沖液 DNA 酶 I DEPC 處理的水 oligo(dT) MgCl2 dNT
實時－RTPCR－實驗
本方法使用Superscription反轉錄系統合成cDNA。進行實時PCR時，FAM或JOE熒光基團既可以標記正向引物，也可以標記反向引物。可以用Trizol試劑提取RNA或按第10章描述的方法提取RNA。樣品中的基因組DNA用DNaseI消化掉（參照第10章）。本實驗來源于PCR實驗指南（第二版
RTPCR實驗步驟
實驗材料：水稻葉片的 RNA 。實驗原理：目前?PCR?技術只能擴增?DNA?模板，對 RNA 模板不能直接擴增。mRNA反轉錄生成的?cDNA?可作為 PCR 的模板進行擴增，這種在 mRNA 反轉錄后進行的 PCR 擴增稱為?RT-PCR?。 RT-PCR 比 Northern 雜交更靈敏，對
RTPCR實驗步驟
一、組織抽提：1.???????取組織塊50-100㎎用液氮在研缽中研磨成粉末2.???????移入玻璃勻漿器加入1ml Trizol?抽打勻漿3.???????移入1.5ml新離心管用5 ml針頭抽打4.???????冰上孵育5分鐘5.???????離心12,000g??4℃??5分鐘?取上清液移
RtPCR實驗準備及與操作步驟2
六、需購置的Rt-PCR材料：（生工. Tel. 2236106.）Taq酶（含MgCl2 Buffer） 200u 70.00dNTP: 1支oligo(dT)15: 1 OD 40.00 promegaM-MLV: 1支 250.00 promega (Buffer)RNasin: 1支 110
RtPCR實驗準備及與操作步驟3
注：1、RNA若用于核酸轉移應溶解于樣本緩沖液中，否則DEPC溶解2、細胞組織加TRIzol勻漿后，可在-60℃放置至少一個月（甚至可一年以上）3、RNA在75%乙醇中，2-8℃至少可保存一周，-20℃至少可保存一年 兩步法RT-PCR （第一步：逆轉錄反應） 試劑 濃度 體積 終濃度
RtPCR實驗準備及與操作步驟1
一、實驗器具與材料：1、移液槍：1ml、200μl、20μl、10μl、2μl2、吸頭：1ml、200μl、20μl3、勻漿管：5ml4、吸頭臺：放置1ml吸頭的一個，放置20μl吸頭的一個5、EP 管：1.5ml、0.2ml、100μl6、試劑瓶：2個60ml的棕色試劑瓶（廣口，帶蓋）1個125m
逆轉錄PCR的原理及操作注意事項
逆轉錄PCR?（?RT-PCR?）的原理逆轉錄PCR (RT-PCR?)具有較高的靈敏性、操作簡單等優點，常用于基因定量分析、生物學檢測等，此外常用逆轉錄PCR克隆目的基因。 本文主要講述了逆轉錄PCR的原理、重要參數以及操作注意事項。cDNA的合成是RT-PCR?的重要環節。以mRNA為模板，在逆
逆轉錄PCR的原理及操作注意事項
逆轉錄PCR?（?RT-PCR?）的原理逆轉錄PCR (RT-PCR?)具有較高的靈敏性、操作簡單等優點，常用于基因定量分析、生物學檢測等，此外常用逆轉錄PCR克隆目的基因。 本文主要講述了逆轉錄PCR的原理、重要參數以及操作注意事項。cDNA的合成是RT-PCR?的重要環節。以mRNA為模板，在逆
RTPCR的操作難點及注意事項
?1.優質RNA的獲取? ? 2.特異性引物設計? ? 3.TaqMan探針的設計和熒光標記物選擇? ? 4.標準曲線分析? ? 一般，DNA樣品的定量標準品為基因組DNA&質粒，RNA樣品的定量標準品為Total RNA&cDNA&體外轉錄RNA。繪制標準曲線的標準品梯度的選擇一般為5——6個梯度
逆轉錄（RT）實驗步驟
一、準備工作1、實驗器具與材料：（1）移液槍：200ul、10ul（2）吸頭：200ul、20ul（3）EP管1。5ml、100ul（4）水浴箱2、實驗器具的處理與準備塑料制品：（包括吸頭、EP管等）將塑料制品逐個浸泡于1‰DEPC水中（必要時小槍頭需要用吸管打入DEPC水）37℃過夜，然后送至高壓
逆轉錄PCR的實驗
?一、實驗器具與材料：1、移液槍：1ml、200μl、20μl、10μl、2μl2、吸頭：1ml、200μl、20μl3、勻漿管：5ml4、吸頭臺：放置1ml吸頭的一個，放置20μl吸頭的一個5、EP管：1.5ml、0.2ml、100μl6、試劑瓶：2個60ml的棕色試劑瓶（廣口，帶蓋）；1個125